免疫沉淀（Immu noprecipitation, IP）原理 IP 是利用抗原蛋白质和抗体的特异性结合以及细菌蛋白质的“protein A/G"特异性地结合到抗体（免疫球蛋白）的 FC 片段的现象开发出来的方法。目前多用 protein A/G 预先结合在 argarose beads 上，使之与含有抗原的溶液及抗体反应后，beads 上的 prorein A/G 就能达到吸附抗原的目的。通过低速离心，可以从含有目的抗原的溶液中将目的抗原与其它抗原分离。 免疫沉淀实验的操作步骤比较多，同时由于在非变性条件下进行实验，所以要得到一个完美的实验结果，不仅需要高质量的抗体，同时对免疫沉淀体系也需要有严格的控制指标。免疫沉淀实验从：蛋白样品处理；抗体-agarose beads 孵育；抗体-agarose beads 复 基本实验步骤 (1）收获细胞，加入适量细胞IP 裂解缓冲液（含蛋白酶抑制剂），冰上或者4℃裂解30min， 12,000g 离心 30 min 后取上清； (2) 取少量裂解液以备 Western blot 分析，剩余裂解液将 1μg 相应的抗体和 10-50 μl protein A/G-beads 加入到细胞裂解液，4°C 缓慢摇晃孵育过夜； (3）免疫沉淀反应后，在 4°C 以 3,000 g 速度离心 5 min，将 protein A/G-beads 离心至管底；将上清小心吸去，protein A/G-beads 用 1ml 裂解缓冲液洗 3－4 次；最后加入15μl 的 2× SDS 加样缓冲液，沸水煮 10 分钟； (4）SDS-PAGE, Western blotting 或进行质谱分析。 一、 样品处理： 免疫沉淀实验成功与否，第一步处理样品非常关键。免疫沉淀实验本质上是处于天然构象状态的抗原和抗体之间的反应，而样品处理的质量决定了抗原抗体反应中的抗原的质量，浓度以及抗原是否处于天然构象状态。所以制备高质量的样品以用于后续的抗体-agarose beads 孵育对免疫沉淀实验是否成功非常关键。在这个环节中，除了要控制所有操作尽量在冰上或者4°完成外，最为关键的是裂解液的成份。 用于免疫沉淀实验的样品一般是原代培养细胞裂解液或者细胞系裂解液。我们以常用的 RIPA 裂解液为例（主要含有 pH7.4 左右的离子缓冲液，接近生理浓度下的 NaCl，一定比例的去垢剂和甘油以及各类蛋白酶抑制剂等）来说明其各主要成份的用途，进而帮助我们如何针对不同的实验目的和不同的蛋白质特性来选择最佳的裂解液。 a． 缓冲液：离子缓冲液常采用 pH7.4 的 Hepes 或者 Tris-Cl。 b． NaCl 浓度一般习惯用 150 mM，这主要是因为 150...
