家兔动脉血压的神经和体液调节VIP免费

山东大学实验报告姓名***系年级*********学号***********科目动物生理学实验同组者***、***日期***********家兔动脉血压的神经和体液调节【实验目的】1.学习直接测定家兔动脉血压的急性实验方法。2.观察神经、体液因素对心血管活动的影响。【实验原理】在正常生理状况下，人和高等动物的动脉血压（arterialbloodpressure，ABP）是相对稳定的。这种相对稳定性是通过神经和体液因素的调节而实现的，其中以颈总动脉-主动脉弓压力感受性反射尤为重要。此反射既可使升高的血压下降，又可使降低的血压升高，故有血压缓冲反射之称谓。家兔的主动脉神经在解剖上独成一支，易于分离与观察其作用。本实验是应用液导系统直接测定动脉血压。即由动脉插管与压力传感器连通，其内充满抗凝液体，构成液导系统，将动脉插管插入动脉内，动脉内的压力及其变化，可通过封闭的液导系统传递到压力传感器，并由计算机采集系统记录下来。【实验材料】1.材料：家兔。2.器具：兔体手术台，常用手术器械，剪毛剪，解剖刀，咬骨钳，止血钳，气管插管，动脉插管，三通管，动脉夹，压力传感器，计算机采集系统，照明灯，注射器，棉花，棉线，银丝电极（双电极）。3.试剂：20﹪氨基甲酸乙酯，4﹪柠檬酸钠溶液，肝素钠溶液，生理盐水。【实验步骤】（一）实验仪器的准备1.打开计算机采集系统，接通压力传感器。从控制界面的菜单“实验项目”中选取“循环实验”的“家兔血压的调节”条，或者直接将相应采集通道的模式调整为“压力”模式。使图线显示压力读数。2.连接液导系统并制压将压力传感器的下方支管，通过输液管连接三通管，再连接动脉插管。上侧管供制压时排除管内空气使用。先用装有20ml4％柠檬酸钠的注射器，通过三通管向连接动脉插管的输液管内推注，使之充满液体（不要使动脉插管高过压力传感器的上方支管）后，再用止血钳夹住动脉插管端的输液管。然后继续向三通管内推注，直至充满压力传感器的上方支管，并用塞子塞住（注意：液导系统内不可有气泡）。继续向三通管内推注，同时观察显示器上压力的变化。当加压到120mmHg（1mmHg=1.33×102Pa）左右即可关闭三通管。观察压力是否变化，如果压力下降，则需要检查液导系统的漏液原因，并重新制压。调节血压显示器的灵敏度，使30~130mmHg的变化都能在显示器上明显地反映出来。将动脉插管端的导管内充满肝素钠溶液。（二）动物准备1山东大学实验报告1.麻醉动物：取一只家兔，称重并剪去耳缘静脉上的被毛。用20ml注射器由耳缘静脉缓慢推注20﹪氨基甲酸乙酯（5g/1kg体重）进行麻醉。2.固定与剪毛：将动物背位固定于手术台上，用剪毛剪将颈部手术野的被毛剪去，即可进行手术。（三）手术1.切开皮肤：一手的拇指和食指按住家兔颈部两侧，另一只手持手术刀，在紧靠喉咙下缘，沿颈部正中线作一长5~7cm的皮肤切口。2.分层分离肌肉：持止血钳轻轻提起少许气管正上方的肌肉，然后用止血钳将肌肉纵向打开一个小口，用止血钳将创口扩大，直至看见肌肉层下方的气管。用止血钳向两侧拉开肌肉，暴露气管。3.气管插管：先在甲状腺后方的气管背面穿过一条棉线，并打一活结备用，然后在气管上方作一倒“T”型切口，将与气管口径相近的气管插管，沿向心方向插入气管，并扎紧备用线，将线固定于气管插管的分叉处，以防气管插管松脱。4.分离颈总动脉、神经：家兔颈部的神经、颈总动脉被结缔组织膜包在一起，形成血管神经束，位于气管两侧。用弯头玻璃分针轻轻划开局部结缔组织束膜，仔细辨认3种神经与颈总动脉：颈总动脉呈红色，有波动，壁有较强的弹性；迷走神经最粗，有较好的韧性，色洁白，一般位于外侧；交感神经较细，略呈灰色，一般位于内测；主动脉神经最细，一般位于两神经之间。在一侧颈总动脉下穿线，打一活结备用，分离同侧3根神经：用一玻璃分针将3根神经挑起，向外拉，使3根神经分开，用另一玻璃分针沿纵向先分开最细的2条神经（颈减压神经和颈交感神经），在分离最粗的神经（颈迷走神经），然后在3根神经下分别穿2条线分别打活结备用；在对侧分离出2~3cm长的颈总动脉，穿2条线，分别打活结，将2条线分别拉至分离出的动脉两端备用。5.动脉插管：首先用注射器吸1-2ml...