SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳实验报告VIP免费

分子生物学实验报告实验名称：SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳班级：生工XXX姓名：XXX同组人:了Xx学号：XXXX日期：XXXX1SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳1引言SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳（SDS-PAGE）是目前分离蛋白质亚基并测定其分子量的常用方法，为检测电泳后凝胶中的蛋白质，一般使用考马斯亮蓝（CBB）染色［1］。本次实验的目的在于学习聚丙烯酰胺凝胶电泳的原理，并掌握聚丙烯酰胺凝胶垂直板电泳分离蛋白质的操作技术。2材料和方法2.1实验原理2.1.1聚丙烯酰胺凝胶的性能及制备原理2.1.1.1性能聚丙烯酰胺凝胶的机械性能好，有弹性，透明，相对地化学稳定，对pH和温度变化比较稳定，在很多溶剂中不溶，是非离子型的，没有吸附和电渗作用。通过改变浓度和交联度，可以控制孔径在广泛的范围内变动，并且制备凝胶的重复性好。由于纯度高和不溶性，因此还适于少量样品的制备，不致污染样品。2.1.1.2制备原理聚丙烯酰胺凝胶是用丙烯酰胺（Acr）和交联剂甲叉双丙烯酰胺（Bis）在催化剂的作用下聚合而成。聚丙烯酰胺凝胶聚合的催化系统有化学聚合和光聚合两种。本实验是用化学聚合。化学聚合的催化剂通常多采用过硫酸铵（AP）或过硫酸钾，此外还需要一种脂肪族叔胺作加速剂，最有效的加速剂是N,N,N',N'-四甲基乙二胺（TEMED）。在叔胺的催化下，由过硫酸铵形成氧的自由基，后者又使单体形成自由基，从而引发聚合反应。叔胺要处于自由碱基状态下才有效，所以在低pH时，常会延长聚合时间；分子氧阻止链的延长，妨碍聚合作用；一些金属也能抑制聚合；冷却可以使聚合速度变慢。通常控制这些因素使聚合在1小时内完成，以便使凝胶的性质稳定。聚丙烯酰胺凝胶电泳和SDS—聚丙烯酰胺凝胶电泳有两种系统，即只有分离胶的连续系统和有浓缩胶与分离胶的不连续系统，不连续系统中最典型、国内外均广泛使用的是著名的Ornstein-Davis高pH碱性不连续系统，其浓缩胶丙烯酰胺浓度为4％，pH=6.8，分离胶的丙烯酰胺浓度为12.5％，pH=8.8。电极缓冲液的pH=8.3，用Tris、SDS和甘氨酸配制。配胶的缓冲液用Tris、SDS和HCl配制。样品在电泳过程中首先通过浓缩胶，在进入分离胶前由于等速电泳现象而被浓缩。这是由于在电泳缓冲液中主要存在三种阴离子，C1-、甘氨酸阴离子以及蛋白质一SDS复合物，在浓缩胶的pH值下，甘氨酸只有少量的电离，所以其电泳迁移率最小，而C1-的电泳迁移率最大。在电场的作用下，C1-最初的迁移速度最快，这样在Cl-后面形成低离子浓度区域，即低电导区，而低电导区会产生较高的2电场强度，因此Cl-后面的离子在较高的电场强度作用下会加速移动。达到稳定状态后，C1-和甘氨酸之间形成稳定移动的界面。而蛋白质一SDS复合物由于相对量较少，聚集在甘氨酸和Cl-的界面附近而被浓缩成很窄的区带（可以被浓缩三百倍），所以在浓缩胶中Cl-是快离子（前导离子），甘氨酸是慢离子（尾随离子）。当甘氨酸到达分离胶后，由于分离胶的pH值（通常pH=8.8）较大，甘氨酸离解度加大，电泳迁移速度变大超过蛋白质一SDS复合物，甘氨酸和Cl-的界面很快超过蛋白质一SDS复合物。这时蛋白质一SDS复合物在分离胶中以本身的电泳迁移速度进行电泳，向正极移动。由于蛋白质一SDS复合物在单位长度上带有相等的电荷，所以它们以相等的迁移速度从浓缩胶进入分离胶，进入分离胶后，由于聚丙烯酰胺的分子筛作用，小分子的蛋白质可以容易的通过凝胶孔径，阻力小，迁移速度快；大分子蛋白质则受到较大的阻力而被滞后，这样蛋白质在电泳过程中就会根据其各自分子量的大小而被分离。溴酚蓝指示剂是一个较小的分子可以自由通过凝胶孔径，所以它显示着电泳的前沿位置。当指示剂到达凝胶底部时，停止电泳，从平板中取出凝胶。在适当的染色液中（如通常使用的考马斯亮蓝）染色几个小时，而后过夜脱色。脱色液去除凝胶中未与蛋白结合的背底染料这时就可以清晰地观察到凝胶中被染色的蛋白质区带。通常凝胶制备需要1〜1.5小时，电泳在25〜3OmA下通常需要3小时，染色2〜3小时，过夜脱色。通常使用的垂直平板电泳可以同时进行多个样品的电泳［2］。2.1.1.3凝胶浓度和交联度与孔径的关系凝胶浓度根据被分离的物质的分子量大小确定。当分析一个未知样品时，常先...