Sou thern Blot 实验流程(包括原理/细节) 一、DNA 的提取 人和哺乳动物细胞基因组DNA 的分离通常是在有EDTA、Sarkos y e 等一类去污剂存在下,用蛋白酶K 消化细胞,随后用酚、氯仿抽提,经RNas e 处理和纯化来提取DNA
(1)取单层细胞,经无钙、镁PBS 洗一次,用0
25%胰蛋白酶消化,细胞悬液经PBS 洗2次,弃上清,取细胞沉淀
(2)加入2ml 细胞裂解液(10mM Tris HCL,pH8
1mol/L EDTA,10mmol/L NaCL,1%SDS)充分混匀,加入蛋白酶K 至终浓度为0
5~1g/L、Sarkos y e 终浓度为0
5%,混匀裂解蛋白呈糊状
(3)50℃水浴 2h,转入37℃水浴过夜,次日加入等体积饱和酚,轻轻颠倒混匀,以防止 DNA 断裂,约 3min
12000r/min 离心 15 分钟(室温) (4)取水相,再加入等体积酚/氯仿(1:1),同样颠倒混匀,去除蛋白质 12000 r/min 离心 15 分钟(室温) (5)再重复步骤(4),再用等体积酚/氯仿(1:1)抽提一次 (6)取水相,再加入等体积氯仿,去除酚及蛋白质,颠倒混匀 12000 r/min 离心 15 分钟(室温) (7)取水相,加入2 倍体积的预冷无水乙醇,沉淀DNA,混匀-20℃放置 1 小时 12000 r/min 离心 15 分钟(室温) (8)用70%乙醇洗涤一次,按上法离心将沉淀真空干燥 10 分钟
(9)加入RNas e A 至终浓度100mg/L,37℃水浴消化1 小时,消化污染的RNA
(10)加入蛋白酶K 至终浓度0
4g/L、Sarkos y e 至终浓度0
5%,混匀,50℃水浴 2 小时,加入NaAC 至终浓度10mmol/L
(11)用等体积饱和酚各抽提一次,步骤同前
(12)吸上清