单细胞凝胶电泳技术VIP免费

单细胞凝胶电泳技术的试验步骤试剂及材料：1）0.01MPBSpH7.3：8gNaCl、0.2gKCl、1.44gNa2HPO4和0.24gKH2PO4,溶于800ml蒸馏水中，用HCl调节溶液的pH值至7.3，最后加蒸馏水定容至1L即可。保存存于室温或4℃冰箱中。2）0.8%正常熔点凝胶（PBS配制）3）0.6％低熔点凝胶（PBS配制）4）毛玻璃片5）盖玻片6）碱性裂解液（2.5mol/LNaCl;100mmol/LNa2EDTA;10mmol/LTris;1%肌氨酸钠），临用前加10％DNMSO，1％TritonX-1007）电泳缓冲液（1mmol/LNa2EDTA;300mmol/LNaOH；Tris.Cl，pH7.5）8）EB（2ug/ml）步骤：1.制备第一层胶：100ml0.8％正常熔点胶，加盖盖玻片，4℃固化10min；2.制备第二层胶：轻轻地去除盖玻片，在第一层胶上滴加75ul含1×10000个细胞的0.6％低熔点胶（cell与凝胶比例为1：5），加盖盖玻片，4℃固化10min；3.裂解：去掉盖玻片，将凝胶浸入冰冷的碱性裂解液内（临用前加10％DMAO，1％TritonX-100），4℃裂解1h；4.取出玻片，用PBS缓冲液漂洗3次后置于水平电泳槽内，加入pH13的电泳缓冲液（没过玻片2-3min），放置20min（黑闭）。5.电泳：电压20V，300mA，30min6.取出玻片，用PBS或Tris.Cl，pH7.5漂洗3次，每次3min；或双蒸水漂洗2次，每次5～15min，7.染色：胶上滴加3ulEB，加盖盖玻片，24h检测。或者4℃，潮湿，闭光的条件下保有胶片，观察时再染色，镜检。1.2.5改良彗星试验操作步骤为节省实验时间，本研究将铺三层胶法改为铺一层胶法，同时在中和及染色等步骤进行了改良，具体操作如下:将已染毒的淋巴细胞悬液与40℃的1%低溶点琼脂糖等浓度混匀后，取70μl混合液直接滴加在磨毛玻片上，加盖玻片，4℃冷凝，20min后揭盖片;4℃于碱性裂解液中裂解1h;解旋20min;4℃电泳（25V，300mA）30min;中和5min;加碘化丙啶，暗处染色10min，加盖片;于莹光显微镜下镜检，照像。四、操作步骤1.各种细胞用冰冷的PBS洗一次，离心收集，用PBS重悬，密度为1×104-5个/ml。2.铺胶：下述各浓度琼脂糖凝胶均用PBS配制。3.第1层凝胶的制备：将加热熔解的正常熔点琼脂糖(NMA)，冷至45-60℃，取适量铺于载玻片CometSlide上，再置4℃下10min使NMA凝固。也可以先铺胶，晾干后无尘存放，1周内使用（据经验，此法较优）。4.第2层凝胶的制备：低熔点琼脂糖LMA在60-70℃水浴加热至少20min使之完全溶化，冷至37℃（可以放置于细胞培养箱中或水浴箱冷却至37℃，低熔点琼脂糖LMA在37℃可维持3小时）。将20μL细胞（约104个）和75μL的LMA混合均匀。然后，迅速将适量含细胞的LMA滴到第1层琼脂糖上，立即盖上另一干净盖玻片，置4℃10min使第2层LMA凝固。注意，使用盖玻片的目的是使琼脂糖平整显微镜下方便观察，经验丰富者，可以不用，也可以达到好效果。5.第3层凝胶的铺制：:第2层LMA凝固后，在室温下小心移去盖玻片，重复第二层的步骤。（此步可以不作，一般铺一层细胞就足够）6.细胞裂解：移去盖玻片，将玻片置于平皿中，轻轻加入预冷的新鲜配置的细胞裂解混合液（配制见试剂使用说明的1，2）。4℃下裂解1-3h。取出载玻片用蒸馏水漂洗2次，要求动作轻柔，以免琼脂糖脱落。7.DNA碱解旋：将载玻片置于水平电泳槽。倒入新配制的电泳缓冲液约覆过载玻片胶面0.25cm左右，室温放置20min，以便使DNA在碱性条件下解螺旋和产生碱易变性区段，使DNA断链在电场中易于迁移。8.细胞电泳：电压15-25V，电压、电流可用改变缓冲液面高低来调节，电泳时间为10-20min。建议预实验，摸索最佳的电压、电流及时间。9.电泳后将载玻片置于平皿内。加入蒸馏水，漂洗2次，每次5min，弃去蒸馏水，每载玻片加2-3滴染色剂，盖上盖玻片（也可以不盖上），避光染色10min。盖上盖玻片的目的是可以隔日分析，或便于操作。10.观察、拍照和分析：荧光显微镜515-560nm（绿光）波长的激发光，可清楚地观察到核DNA和迁移的DNA(即慧星尾)。色泽和图像十分精美，每个样本随机选择20-100个细胞，图片保存后，用相应的软件分析结果。。单细胞凝胶电泳（彗星实验）操作步骤1.各种细胞用冰冷的PBS洗1～2次，离心收集，用PBS0.3ml重悬，密度为1×105-6个/ml。2.铺胶：下述各浓度琼脂糖凝胶均用PBS配制。3.第1层凝胶的制备：用微波炉加热溶解正常熔点琼脂...