家兔呼吸功能不全实验一、实验目的1.观察血液中化学因素（PCO2、P02、H+）的改变对家兔呼吸运动（频率、节律、幅度）的影响，探讨其作用机制。2.通过造成动物窒息、气胸和肺水肿，以复制通气功能障碍、气体弥散障碍及肺泡通气与血流比例失调所引起的I型或II型呼吸功能不全模型。二、实验动物家兔，体重2.00kg,性别：雄。三、实验药品及器材药品：20%乌拉坦，盐酸利多卡因（批号：1304125）,125U/ml肝素溶液（批号：1212010），油酸。器材：手术器械，注射器（1ml、5ml、10ml、20ml、50ml），动脉导管，压力换能器，Y型玻璃气管插管，HX200型呼吸流量换能器，RM6240多道生物信号采集处理系统，头皮针，动脉夹，兔手术台，听诊器，血气分析仪。四、实验方法1•麻醉：抓取成年家兔一只，称重（2.00kg），于耳缘静脉缓慢注入20%乌拉坦10ml（0.5ml/100g*2.00=10.00ml），作全身麻醉。家兔未完全麻醉，后补注2ml乌拉坦，2min后家兔耳朵下垂，角膜反射明显消失，四肢瘫软，止血钳夹紧无疼痛反射，视为麻醉完全，推注3ml肝素抗凝。将家兔仰卧位固定在手术台上，用牙线将家兔牙齿固定在兔手术台上。2.调试仪器：将呼吸换能器固定在铁支架上，输出线连接生物信号采集系统的通道。将压力换能器固定于铁架上，其位置应与仰卧家兔心脏在同一平面，输出线连接生物信号采集系统。在电脑的软件系统中找到呼吸运动及心电图记录，调节仪器参数。3.动脉气管分离：剪去颈前部兔毛，注射局麻药盐酸利多卡因0.6ml后，喉头部正中切开皮肤，逐层钝性分离家兔颈前组织，暴露气管及颈总动脉。用玻璃分针仔细分离颈总动脉与其伴行的迷走神经；用止血钳分离气管，在气管下穿两根结扎线备用。4.动脉插管：用细线结扎远心端，用动脉夹夹住近心端，在其间远心端部分剪一小口，做颈动脉插管，结扎固定导管，推注少许肝素以防凝血，接上三通管记录血压。5•气管插管：剥离气管表面毛细血管及表面的膜，在环状软骨下1cm处做倒T型剪口，用棉签将气管切口及气管里的血液和分泌物擦净，气管插管由剪口处向肺部插入。用粗结扎线将插管口结扎固定，另一结扎线在切口的头端结扎止血。用温热生理盐水纱布覆盖手术野。6.监测正常血压、心率、呼吸频率，用听诊器听心音强度、肺部呼吸音等。描记一段正常的血压图和呼吸运动曲线，以监测值作为正常对照值。7.第一次血气分析作为正常血气对照。8．疾病模型复制1）复制阻塞性通气障碍：A.用止血钳将Y型气管插管上端所套橡皮管完全夹闭，造成动物不完全窒息至家兔出现紫绀，观察记录呼吸频率、幅度及血压等的变化。B.立即进行第二次血气分析并解除夹闭，等待10min左右，观察记录各生理参数恢复状况。2）复制限制性通气障碍：A.于家兔右胸4~5肋间插入16号针头（钝头），注入空气50ml，造成右侧轻微气胸，观察各生理参数的变化状况，10min后进行第三次血气分析。B.用50ml注射器将胸腔内空气抽尽，抽出48ml并拔出针头，等候10min，观察记录家兔呼吸血压等生理参数恢复状况。C.再注入90ml空气造成右肺严重气胸，观察到家兔呼吸频率急剧下降，防止家兔死亡，立即进行第四次血气分析后抽出家兔胸腔里的空气90ml,等候10min左右观察家兔恢复情况。3）复制肺水肿（油酸引起的肺水肿）A.从耳缘静脉缓慢注入油酸0.14ml，观察其呼吸频率、幅度及血压等生理参数变化及呼吸音变化。B.由于呼吸音一直无变化，于是又两次推注油酸0.14ml及生理盐水共72ml。在家兔濒危时进行第五次血气分析。最后气管插管中出现粉红色泡沫样痰，且听见肺部间歇性的湿罗音。9.家兔死亡。10.观察输尿管：将家兔尸体解剖，观察家兔内部结构，并找到家兔的膀胱，将膀胱翻转，可以观察到家兔的两条细长的白色输尿管，输尿管与膀胱呈现“桥状”连接。11•家兔尸体回收，清洗实验器械，整理手术台，结束实验。5、实验结果及数据1.家兔气管插管前的正常动脉血压及测量值，如图1及表一所示。图1：家兔气管插管前的血压2•家兔动脉插管及气管插管后血压、呼吸及其测量值，如图2、3及表一、所示。图2：气管插管后血压/示o图3：气管插管后呼吸3•家兔第一次血气分析后血压、呼吸及其测量值，如图4、5及表一、二所图4：第一次血气分...
