抗体的纯化与检测详细版VIP免费

抗体的纯化和检测•抗体的纯化•抗体的检测怎么纯化我们想要的抗体？常见单抗的结构、种类、性质每个单抗等电点、电荷密度、疏水性、糖基化程度等生化性质各不相同。选择单抗的纯化方法，既要了解他们的共性，又要了解个性，从而制定相应的纯化策略(下表3)。单抗特性及纯化策略纯化步骤#抗体的纯化#抗体纯化的步骤#抗体的纯化##抗体的纯化#饱和硫酸铵沉淀法•饱和硫酸氨分级沉淀法是从溶液中分离蛋白质的常用方法。这是一种比较原始，非特异性分离技术。•饱和硫酸氨沉淀法作为抗体纯化的第一步,难以得到高纯度的抗体。但是它能够浓缩和出去大部分的蛋白质，尤其是脂蛋白#抗体的纯化##抗体的纯化#盐离子溶液盐离子溶液水分子水分子蛋白质溶液蛋白质溶液竞争关系竞争关系溶解度溶解度基本原理这种方法称之为盐析。盐浓度通常用饱和度来表示。硫酸铵因其溶解度大，温度系数小和不易使蛋白质变性而被广泛应用。水化膜强弱2，操作步骤•以腹水或组织培养上清液为例来介绍抗体的硫酸铵沉淀。各种不同的免疫球蛋白盐析所需硫酸铵的饱和度也不完全相同。通常用来分离抗体的硫酸铵饱和度为33%—50%•（一）配制饱和硫酸铵溶液（SAS）根据样品中的蛋白质的含量以及种类的配制饱和浓度的硫酸铵溶液来沉淀样品中的大多数蛋白质。当然这一步也有利于后边的层析。出去杂质出去杂质破碎沉淀细胞破碎沉淀细胞抗体在里边抗体在里边盐析蛋白盐析蛋白充分沉淀蛋白充分沉淀蛋白样品预处理10000r，30min离心保留上清液加入饱和SAS（1:1）搅拌过夜（4度）透析袋沉淀离心沉淀蛋白沉淀10000r，30min，离心溶解PBS溶液叠氮钠弃上清液弃上清液蛋白成分：抗体，极少量杂蛋白，SAS蛋白成分：抗体，极少量杂蛋白，SAS3-6个小时更换一次透析缓冲液（24-48h）3-6个小时更换一次透析缓冲液（24-48h）亲和层析是一种快速有效的生物活性物质的纯化方法,它通过偶联蛋白对目的蛋白选择性的吸收和分离,可取得较高的纯化效果,且操作简便,广泛地应用于实验室抗体纯化。由于产品价格昂贵,使用成本较高,限制了它的运用。ProteinA/G亲和层析•ProteinA•A蛋白是金黄色葡萄球菌的表面蛋白,分子量为42KD,有6个不同的IgG结合位点。其中有5个位点对IgG的Fc片段显示很强的特异性亲和力,不同的位点独立地与抗体结合。但IgA,IgM,IgE也可能结合在配体上,当达到饱和时,一个A蛋白分子至少可以结合两个IgG分子。A蛋白对IgG有高亲和力和特异性,这一特点使之非常适合用于纯化腹水或细胞培养上清中的单克隆抗体•ProteinGG蛋白是一种源自链球菌G族的细胞表面蛋白，一种三型Fc受体。其通过类似于A蛋白的非免疫机制与抗体的Fc段结合。像A蛋白一样，G蛋白与IgG的Fc区域特异性结合，不同的是，ProteinGSepharose还可以特异性低亲和地与重链的CH1及轻链的Cκ结合而用于纯化Fab及F(ab’)2。另外，ProteinG可以广泛、更强地结合许多类型的IgG，多克隆IgG及人IgG，同时血清蛋白结合水平更低，纯度更高，配体脱落也相对更低。重链ProteinA-SepharoseCL2-4B亲和层析柱分离提纯IgG•ProteinA--SepharoseCL24B亲和层析法的原理:A蛋白可与IgG上的Fc段特异性地结合,与小鼠IgG的各亚类表现为不同的结合力,结合的强弱程度依次是:IgG2a>IgG2b>IgG3>IgG1。A蛋白的这种结合也是具有pH依赖性的,即可利用改变pH及离子强度,纯化与其结合较弱的IgG1。洗脱腹水处理装柱平衡上样12000r，15min，去除大的凝块将ProteinA-SepharoseCL-4B干粉溶解,再用pH7.4的磷酸盐缓冲液浸泡15min,然后装入层析柱中。缓冲液平衡柱子，测ph=7.4缓冲液稀释，滤膜过滤用ph=4.0的柠檬酸溶液洗脱抗体，再用ph=9.0的Tris-hcl缓冲液调节至7.0。应用AKTAexplorer100进行监测,当观察到基线开始上升,即出现洗脱峰时,开始收集洗脱液至洗脱峰回到基线后，使用上样缓冲液平衡柱子平衡电泳鉴定采用SDS不连续丙烯酰胺凝胶电泳层析图及电泳结果AKTA蛋白纯化系统AKTA主要是根据电导率的不同级盐浓度的不同来洗脱不同的物质。系统主要分为两部分，分别是检测系统和层析柱，根据洗脱的不同的ph值来确定洗脱的物质是什么。当然全自动的AKTA系统可以多柱，多样品，多缓冲液，多组份检测，其检测功能包括多波...