CTAB—硅珠法提取DNA 实验流程 前言: 实验是要求非常严谨的过程,每个一步骤都可能对后面的操作产生很大影响,乃至影响后面的结果.一步错,步步错,每一个操作的失误都可能导致整个实验的失败. 事实求是与踏踏实实的作风是每个做实验的人必备的基本品质.永远记住,任何弄虚作假的行为都是可耻的. 在这个充满学术腐败的科学界,保持自己的纯真. 谨记 1.材料的采集 采取植物的嫩叶,可以用硅胶干燥保存,也可以用冰袋,主要是防止叶片组织的降解及叶片的褐化.用泡沫塑料箱子带回,置于-70℃冰箱保存. 2.CTAB—硅珠法提取DNA 实验流程 各加入液体的配制： 1、CTAB 提取液： 2%（W/V g/mol ）CTAB； 5%（W/V g/mol）PVP； 1.4mol/lNaCl； 20mmol/L EDTA PH=8.0； l00mmol/l Tris-HCl PH=8.0； 2%(V/V)巯基乙醇(临时加入) 配制量：500ml 配制方法： (1)计算所需组分量 CTAB 10g 需热磁力搅拌 PVP 25g NaCl 40.908g EDTA.Na2.2H2O 3.7224g 调 PH=8 冷却为常温时(母液) Tris 6.057g (2)称取CTAB 10 g， NaCl 40.908g， PVP 25g 置于500ml 烧杯中 (3)加入约 300dd H2O(双蒸水)充分磁力搅拌溶解 (注意：EDTA 和 PVP 较难溶，加热溶解的同时用热磁力搅拌直至完全的透明为止) (4)量取20mlEDTA(0.5mol/l PH=8 )， 50ml Tris-HCl(1 mol/l PH=8)溶液于烧杯中，均匀混合 (5)将烧杯溶液定容至500ml 后，高温高压灭菌 (6)室温保存。 0.5mol/LEDTA 配制 组分浓度： 0.5mol/l EDTA， PH=8 配制量：500ml 配制方法(1)称取93.06 克 EDTA.Na2.2H2O，置于500 ml 烧杯中 (2)加入约 400ml dd H2O.用热磁力搅拌器充分搅拌 (3)用NaOH 调节 PH 值到 8，约用10 克固体 NaOH (4)在溶液冷却后，再用NaOH 调节至PH=8 (5)加 dd H2O 将溶液定容到 500 ml (6)高温高压灭菌后，室温保存 NaOH 溶液的配制 组分浓度：5 mol/l NaOH 配制量：100 ml 配制方法(1)称取固体NaOH20 克于容器中 (2)加入dd H2O 定容到100 ml 100 mmol/l Tris-HCl 的配制 组分浓度： mmol/l Tris-HCl， PH=6.4 配制量：250 ml 配制方法(1)称取3.025 克Tris 于250 ml 烧杯中. (2)加入约200ml dd H2O 充分搅拌溶解. (3)用浓盐酸调节PH 值到6.4.所用浓盐酸约3 ml (4)将溶液定容至250ml (5)用棕色瓶分装于4 度冰箱中 (6)如使用，用水浴加热溶解. 2、氯仿-异戊醇的配制： 配制方...
