超级感受态细胞的制备1
第一天晚上,将置于液氮中保存的大肠杆菌(DH5α)画线在 LB 平板上,37℃倒置培育活化(一般需 12-16h 也就是过夜即可,时间过长易有杂菌的微克隆)
第二天早上,距前一天晚上约 13 个小时将划线的平板从 37 度拿出 4 度放置,晚上挑取一个经 37℃培育过夜活化的单菌落(2-3mm 直径),接种至试管中的 3mlSOB 培育液中, 200 转过夜培育 12-16h;3
第三天早上,将上述培育物接种于三个盛有 100ml 的 SOB 培育液的 250ml 锥形瓶中;4
培育约 2 小时后,测量培育物的 OD 值,以后每 45min 测定一次;5
当培育物的 OD 值达到 0
7 时,将培育瓶置于冰上 10min;6
(提前预冷离心机,可将 50mL 离心管以及 TB 缓冲液放入制冰机中预冷)将 100ml 菌液分装到四个 50mL 离心管中,4℃,4000rpm 离心 10min;7
倒去培育液,将离心管倒扣在吸水纸上 2min 以吸干剩余液体;8
用 4mlTB 缓冲液分别将 4 个离心管的沉淀悬浮,并至一个离心管加至 30ml 预冷的 TB缓冲液,将细胞混匀(菌比较脆弱
可将 TB 缓冲液打到离心管壁上让其自动流下);9
于 4 ,4000rpm℃离心 10min 收集菌体;10
倒去上层培育液,将离心管倒扣在吸水纸上 2min 以吸干剩余液体;11
用 4ml(第一次做可以先少加一点缓冲液重悬,若感觉效率挺高以后再做可以适当多加一点缓冲液,动作要轻)预冷的 TB 缓冲液轻轻重悬沉淀;12
加适量 DMSO 至终浓度 7%(没有找到 DMSO 我用甘油代替,甘油终浓度为 15%)
轻轻混匀细菌悬夜,放置冰上 10min;13
迅速将悬夜分装到冷却的离心 1
5ml 离心管中(100μl/管 ),投入液氮中快