动物生理学实验生物学院2011年春季学期一、动物生理学实验课目的掌握生理学实验的基本操作技术验证某些生理学基本理论学会科学的思维方法，提高分析问题和解决问题的能力，培养严肃认真的态度、严谨的工作方法和实事求是的工作作风。二、实验报告的写作与要求学号、姓名、班级、组别、日期实验序号及实验题目实验目的：实验方法：简要描述实验结果：报告之关键——真实讨论和结论：报告之核心——根据已知的理论知识对结果进行解释和分析※按时上交,勿抄袭！！！三、实验室规则守时守纪，有事请假实验前——预习实验中——有条不紊、严肃认真、节约；仔细观察、认真思考分析实验后——器材整理、器械擦洗、实验室的清洁整理；整理实验记录，得出实验结论、认真撰写实验报告成绩组成1.实验报告：40分（前7次实验）2.实验过程：40分（课堂随时记录打分）3.考勤：10分4.实验设计:10分合计：100分识别常用手术器械并掌握其使用方法；学习常用生理实验仪器的基本原理与操作注意事项；掌握动物的正确抓握、麻醉、固定、采血方法实验一.生理学实验基础知识坐骨神经腓肠肌标本制备，阈刺激，阈上刺激与最大刺激，骨骼肌的单收缩与复合收缩，心肌收缩记录与心肌特性实验二.肌肉收缩的特性红细胞比容测定血沉的测定，血红蛋白含量的测定；红细胞计数，白细胞计数，实验三.血液的基本特性1.学习蛙心灌流方法2.观察钙离子，钾离子，肾上腺素，乙酰胆碱等体液因素对心脏活动的影响。实验四.离体蛙心灌流实验学习和掌握兔动脉血压的直接测定方法学习血压的神经体液调节机理实验五.兔动脉血压的直接测定方法1.学习胸内负压的测定方法,观察在呼吸周期中胸内负压的变化规律2.学习肺牵张反射的机理，分析影响呼吸运动的因素实验六.胸内负压测定,呼吸运动调节1．观察动物在体胃肠运动的形式（蠕动、分节运动、摆动）及调节2．学习离体器官灌流的方法，理解哺乳动物离体肠段的一般生理特性3.影响小肠吸收的因素实验七.肠胃运动的直接观察和小肠吸收利用学过的生理学实验技术，自己命题设计实验，此节课以PPT形式展示，讲解，同学互相讨论。实验八.设计实验及讨论识别常用手术器械并掌握其使用方法；学习常用生理实验仪器的基本原理与操作注意事项；掌握动物的正确抓握、麻醉、固定、采血方法实验一.生理学实验基础知识动物生理学常用器械及用法介绍（一）手术刀1.执握式2.执笔式3.全握式4.反挑式手术刀片的安装执握式全握式直圆手术剪、弯圆手术剪直尖手术剪、弯尖手术剪直眼科剪、弯眼科剪（二）手术剪（三）剪毛剪（弯圆手术剪）（四）止血钳（大、中、小）–有齿直止血钳、有齿弯止血钳–无齿直止血钳、无齿弯止血钳–蚊嘴钳（蚊式止血钳）常用手术器材动物生理学手术操作训练：动物生理学手术操作训练：————家兔颈动脉插管及动脉血采集家兔颈动脉插管及动脉血采集（一）兔抓握方法（二）麻醉（三）背位交叉固定（四）颈动脉插管手术操作（一）家兔的捉拿与保定（二）混合麻醉剂注射1.Nembutal混合麻醉剂2.麻醉方法：I.全身麻醉静脉注射——耳缘静脉注射（兔）吸入式麻醉——小动物II.局部麻醉皮下注射肌肉注射Nembutal混合麻醉剂戊巴比妥钠戊巴比妥钠55克克丙二醇丙二醇40ml40ml乙醇乙醇10.5ml10.5ml蒸馏水蒸馏水49.5ml49.5ml耳缘静脉注射速眠新0.2ml/kg注意：请不要直接注射麻醉剂先注射生理盐水进行练习（三）（三）背位交叉固定1.打活结2.背位交叉固定背位交叉固定（四）（四）颈动脉放血手术操作1.剪毛2.锐性剖开颈部皮肤3.钝性分离肌肉直至暴露气管4.钝性分离颈动脉（辨认动脉、静脉、神经）5.用玻璃分针分离颈动脉血管表面结缔组织，暴露血管4-5cm长度6.钝性分离迷走神经、交感神经和减压神经7.穿双线8.结扎离心端，用动脉夹夹住向心端9.用眼科剪在离心端与颈动脉成45度角剪一小口10.插入颈动脉插管，结扎插管与血管结合部位11.松开动脉夹，进行颈动脉放血。（四）（四）颈动脉放血手术操作动脉血压的测定(兔)实验项目血压变化原因刺激减压神经降低刺激减压神经中枢端降低减压神经为传入神经刺激减压神经外周端无变化刺激迷走神经中枢端无变化迷走神...
