细胞培养系列方法【实验前准备】（1）实验前准备好高压的离心管、冻存管、1ml/100ul枪头、PBS溶液。（2）清洁超净工作台面，照紫外30分钟；同时根据需要将培养基、胎牛血清、胰酶PBS液、双抗置于室温下复温。细胞的冻存与复苏【实验用品】（1）材料：培养的贴壁细胞（70%-80%融合）、于液氮中冻存的细胞（2）试剂：PBS液、0.25%胰蛋白酶液、DMEM培养基、胎牛血清、二甲亚砜（DMSO）、双抗（3）设备：培养瓶、巴氏吸管、15ml离心管、1.5ml冻存管、盛酒精的喷壶、酒精灯、水浴锅、CO2培养箱、离心机、液氮灌、倒置显微镜、超净工作台。试剂配制：（1）完全培养基含90%DMEM培养液加10%的胎牛血清加1%的双抗。（2）冻存液含80%的DMEM培养基加10%的胎牛血清加10%的DMSO，用吸管混匀，置于4℃冰箱中备用。细胞的冻存(1)依照传代的方法用0.25%胰蛋白酶液对处于对数生长期的单层细胞进行消化。(2)收集消化细胞于离心管中，800-1000r/min离心5min。(3)弃上清液，加入适量冻存液，用吸管吹打细胞制悬，调整细胞密度为5*106-1*107个/ml。(4)每个冻存管分装细胞悬液1.5ml，旋紧冻存管的盖，并用封口膜密封。(5)在冻存管上标明细胞的名称、冻存时间、冻存人名等。(6)将冻存管置于如下条件下逐步加以冻存：4℃,0.5h→-20℃，1h→-80℃，过夜→转入液氮灌中。细胞的复苏（1）准备水浴锅，调温度至38℃。打开离心机。（2）用止血钳从液氮灌中取出细胞冻存管1只，迅速将其置入38℃水浴锅中，不断摇动使冻存的细胞悬液尽快融化。（3）用酒精棉球擦拭冻存管，放入超净工作台中。（4）将已融化的细胞悬液用吸管移入离心管中，加10倍体积的DMEM培养基，吹打混匀。（5）1500r/min离心4min，弃上清液。（6）加入培养液吹打沉淀的细胞，使其悬浮，对细胞进行计数。（7）按5*105个/ml的细胞浓度，将细胞接种在培养瓶中，置于培养箱中培养。（8）24h后取出培养瓶，观察细胞生长状况。【注意事项】（1）对数期的细胞增值能力强，冻存后生存率较高，因此，在进行细胞冻存时，应尽量选择处于此期的细胞加以冻存。（2）为了保证复苏后细胞的存活率，复苏接种时，细胞的浓度不能太低，最好控制在5*106-1*107个/ml，这样才能保证复苏成功。（3）冻存管的瓶盖应封盖严密，以免复苏时细胞外溢。（4）复苏时，从液氮取出冻存管到水浴中融化的过程要快，否则会导致冰晶的形成，伤害细胞。同时，一次复苏的冻存管数量不要太多，否则会引起水浴锅中传热不佳，延缓冻存的细胞悬液融化的时间。（5）为防止液氮冻伤，注意戴上防护手套。【实验结果及分析】经复苏刚接种的细胞是悬浮于培养基中的。复苏成功的细胞24h左右可贴壁，48h后即可开始生长、增殖。复苏不成功的细胞，将继续悬浮于培养液中，不能贴壁。细胞的传代培养【实验用品】（1）材料：原代培养的肝细胞、原代培养的外周血淋巴细胞（2）试剂：PBS液、DMEM培养基（含10%小牛血清）、0.25%胰蛋白酶消化液（3）设备：25ml培养瓶、吸管、离心管、酒精棉球、酒精灯、离心机、倒置显微镜、超净工作台、C02培养箱【实验方案】1.贴壁细胞的传代培养（1）用吸管吸出原代培养的肝细胞培养瓶中培养液。（2）向瓶内加入适量的PBS液，轻轻摇动后倒掉。（3）每25ml的培养瓶内加入0.25%胰蛋白酶消化液1ml，消化液的量以覆盖整个细胞培养面为宜，置于37℃的培养箱环境中。轻轻摇动培养瓶，在倒置显微镜下对培养细胞进行观察，当细胞胞质回缩、细胞间隙增大时，迅速将消化液吸出。（4）加入PBS液于培养瓶中，轻轻转动培养瓶，然后用吸管将溶液吸出，加入含血清的培养液终止消化。（5）用吸管吸取培养液，反复轻轻吹打瓶壁，制备细胞悬液。吹打的部位应均匀，可按从上到下、从左到右的顺序进行，保证瓶底各个部位的细胞均能被吹到。此外，吹打时不能用力过猛，尽量不出现气泡，以免损伤细胞。（6）将吹打后的细胞置于倒置显微镜下观察，当发现原贴壁的细胞均已悬浮于培养液中，成片的细胞已分散成小的细胞团或单细胞，即可终止吹打。（7）收集细胞悬液于离心管中，1000r/min，离心5-8min，去除上清。（8）细胞计数，按照1*105-1*106个细胞的密度接种细胞于新培养瓶中。2.悬浮细胞的...
