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细胞培养的操作流程VIP专享VIP免费

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实验题目:细胞传代 实验材料:细胞培养箱,安全柜,手套,酒精灯,吸管,移液管(5ml,10ml),50mL 离心管,培养瓶(25cm2),移液枪,离心机,计时器,真空泵,抽滤瓶,水浴锅,记号笔,冰箱 实验原理: 细胞在培养瓶长成致密单层后,已基本上饱和,为使细胞能继续生长,同时也将细胞数量扩大,就必须进行传代(再培养)。 传代培养也是一种将细胞种保存下去的方法。同时也是利用培养细胞进行各种实验的必经过程。 实验步骤:以 Hela 细胞为例说明具体实验操作步骤 一.实验前准备工作: 进细胞室先换拖鞋,带上手套 75%的酒精进行表面消毒; 检查酒精灯有无95%酒精,电枪有无电; 将实验过程中用到的实验器材(包括培养瓶、50mL 离心管、移液管)放于安全柜里,实验前安全柜开紫外照15~20min; 将细胞培养液放于37℃水浴中预热; 抽滤瓶与真空泵相连,废弃缸套袋。 二..准备实验: 先关闭紫外等 30min 后再进行实验; 75%酒精喷于纸上,将超净工作台仔细擦试干净; 点燃酒精灯,小心的将细胞从孵箱中拿出。 1.吸除旧的 DMEM 培养液: 拿出吸管(要拿吸管的上端),插入与抽滤瓶相连的橡胶管中,在酒精灯外焰灼烧灭菌,细胞培养瓶倾斜将吸管插入瓶底部一角,吸出旧的 DMEM 培养液,将用后的吸管弃于废弃缸里。注意:一定要吸除干净,否则消化时间过长,细胞损伤过大。 2.消化: 拿出 5mL 移液管,插入电枪中,酒精灯过火灼烧,吸取 2mL 0.25%胰酶加入培养瓶中,混匀,放于37℃孵箱中消化 5-6min。 取下用后的移液管。 3.中和: 从孵箱中拿出培养瓶,显微镜下观察细胞是否被完全消化下来,5mL 灭菌后移液管加入 3mL DMEM 培养液终止消化。 反复吹打混匀;吸出中和液转移到50mL 离心管中。 4.离心收集细胞: 配平后离心200×g,3min。将新的DMEM 培养液加入新培养瓶中,2mL/瓶(培养瓶底面积为25cm2)。 5.重悬细胞: 离心后吸出中和液,(先吸出表面泡沫,一定注意不要吸出细胞)。加入新DMEM 培养液(按2mL/瓶和细胞传代数计算加入的培养液体积),用电枪反复吹打使细胞充分混匀,要尽量减少产生气泡。 6.分装: 混匀后将细胞分装,按2mL/瓶得体积加入培养瓶中,充分混匀。记号笔标记细胞名称,培养液,细胞传代数,传代日期,实验人员。 7.培养: 将细胞放于37℃,4% CO2 细胞培养箱培养。将0.25%胰酶,细胞培养液密封好放于4℃冰箱中保存。 8.清洁安全柜 实验完毕后,盖...

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