小鼠解剖实验报告篇一：实验动物学实验报告实验动物学实验报告一、实验动物：小鼠二、操作流程：抓取，固定，编号，给药，取血，麻醉，绝育，解剖。三、具体操作一、抓取：抓取小鼠时，右手抓住小鼠尾巴，不要过于使劲，以避免惊吓小鼠。左手从小鼠身体后部向前抓（以避免小鼠向后缩咬伤自己），抓住小鼠颈部。固定住小鼠后，将小鼠皮肤往上抓，尽可能将小鼠背部皮肤抓住。左手将小鼠腹部朝向自己，把小鼠尾巴用左手无名指和小指夹住，这时小鼠腹部皮肤紧绷，不能动弹。二、固定：通常利用固定器进行固定。将固定器拧开后，抓住小鼠尾巴，使其钻入固定器中，再将拧下的固定器部份装好，使小鼠尾部露出，再将可旋转的铁片固定住即可进行后续实验。3、编号：编号方式有两种：①剪脚趾编号：把小鼠腹面朝上，在下的脚趾从左至右依次编为1~10号，剪10号脚趾加1~9号脚趾依次编为11~19号，在上的脚趾依次编为20,30,40,50,60,70,80,90号，其余编号与11~19号类似。②打耳钉编号：耳钉上均有唯一编号，通过利用耳钉钳将耳钉打在小鼠耳朵上即可。实验时通常利用的是第一种方式进行编号，第二种编号通常常利用于需要长距离运输的动物。4、给药：常常利用的给药方式有：①口服给药：即灌胃。将注射器装入药物溶液，装上灌胃针（灌胃针有直头和弯头两种，区别不大）。如上所述，抓取小鼠后，使其头部朝上，尽可能呈一直线，取灌胃针，从小鼠嘴角一侧缓缓插入（维持刻度在自己能看到的位置），顺着小鼠口腔食道的弧度让小鼠将针咽入，灌胃进程中若是碰到阻碍必然要及时拔出灌胃针，不可强行灌胃以避免伤及小鼠食道和肺部。灌胃针顺利进入后大体与小鼠身体呈一条直线，注入适量体积后再顺着食道缓缓掏出灌胃针。②静脉注射：小鼠尾部有3条静脉和1条动脉，3条静脉非别位于背部，及双侧。静脉注射时一般选取双侧静脉，因为其相对于背部静脉更为清楚饱满。将小鼠固定后，用酒精擦拭其尾部静脉，使其充血，以便注射。以后使注射器针孔处朝上，针与尾部呈约30°扎入尾部后向上轻挑，再向内扎入部份，此进程应该比较顺畅，没有阻碍，若阻碍较大则有可能扎入到了皮肤中。扎入后将活塞向后回抽一点可见到有血回流，则说明成功扎入静脉当中，注射适当体积后迅速拔针，用酒精进行消毒。五、取血：有断尾取血法和眼眶取血法两种。本次实验利用的是眼眶取血法。抓取小鼠，固定其头部用手指将其上下眼睑分开，露出其眼球而且不能闭上。用玻璃毛细管从其上眼角处扎入眼球后方毛细血管从，使血液顺着毛细管留下，取血完成后快速将毛细管取下。六、麻醉：抓取老鼠，使其头部朝下，使其腹部脏器向胸腔靠拢，露出腹部空腔，以避免刺伤脏器。将注射器竖直扎入靠近后腿部腹腔，刺入以后略微向前倾斜但不要向前刺入，一般注入0.5mL镇痛剂即可。随后拔出针，方向小鼠，等待几分钟后即可麻醉。7、绝育：绝育手术是通过剪除雌鼠卵巢或雄鼠输精管来实现的。将麻醉的雌鼠背面朝上，从其胸腔和尾部之间向下三分之一处剪开一个小口，用镊子将其卵巢掏出，上面呈现红色斑点的部份即为卵巢，用剪子将这一部份剪除，然后用缝合针线将其缝合，缝合方式为将针穿事后，将线缠绕镊子两圈再逆时针缠绕两圈，再重复缠绕一遍，将镊子夹住线头把缠绕的线移至线头系紧即可（缝合进程全程用镊子和剪子操作），里面肌肉层和外面皮层均需缝合。雄鼠则从外生殖器向上1-2cm处剪开小口，用镊子在其中找出输精管（较细长的乳白色小管），尽可能多减掉一些，以避免其长长愈合，以上述方式缝合伤口即可。九、解剖：以颈椎脱臼法处死小鼠，使其腹面朝上。用镊子将其腹部皮肤夹起，然后用剪子剪开，观察各个器官所在位置和形态，解剖完的小鼠放入尸身袋中。篇二：小鼠解剖实验小鼠的腹腔解剖实验一、实验小鼠处死二、小鼠体腔整体解剖三、小鼠腹腔Shinysurfaceoftheorgansisthevisceralperitoneum;shinyliningtheabdominalwallistheparietalperitoneum四、小鼠横膈Thediaphragmisthethinmuscularmembranebelowtheheartandabovetheliver（secondsquarefromthetop）五、小鼠腹腔重要脏器一览Ignorethetopsquare(lunginthorax).Fromtheredownaretheliver,s...
