表达蛋白的分离与纯化大肠杆菌表达蛋白以可溶和不溶两种形式存在，需要不同的纯化策略。现在，许多蛋白质正在被发现而事先并不知道它们的功能，这些自然需要将蛋白质分离出来后，进行进一步的讨论来获得。分析蛋白质的方法学现已极大的简化和改进。现已有多种方法可以利用，蛋白质纯化策略也已实际可行。目前，待讨论蛋白或酶的基因的获得已是相当普遍的事。可诱导表达系统特别是Studier 等进展的以噬菌体 T7 RNA 聚合酶为基础的表达系统的出现使人们能近乎常规地获得高表达水平的蛋白，表达水平可达细胞蛋白的 2%以上，有些甚至高达 50%。一、可溶性产物的纯化（融合 6×His·Tag 的表达蛋白）（一）试剂准备1．Ni-IDA/Ni-NTA Resin2．5 M NaCl 溶液 292.2 g NaCl（MW 58.44）溶解至 ddH2O, 定容至 1 L。3．5 M Imidazole 溶液 340.4 g Imidazole（MW 68.08）溶解至 ddH2O, 定容至 1 L, 4℃保存。4．1 M Tris-HCl 溶液（pH 8.0） 121.14 g Tris base（MW 121.14）溶解至 ddH2O, 使用浓盐酸调节 pH 至8.0，定容至 1 L。5．Lysis buffer/Binding buffer Tris-HCl（pH 8.0） 25 mM NaCl 150 mM6．Wash buffer Tris-HCl（pH 8.0） 25 mM NaCl 150 mM Imidazole 20 mM7．Elution buffer Tris-HCl（pH 8.0） 25 mM NaCl 150 mM Imidazole 250 mM8．Regeneration buffer NaCl 500 mM Imidazole 500 mM（二）操作步骤1. 将 500 mL 含重组表达质粒的菌体诱导后，离心 5000 g×5 min，弃上清，收获菌体，用 40 mL Lysis buffer 重悬。2. 重悬液于冰上超声处理，直至样品澄清，4℃离心 14000 g×30 min，取上清。3. 将 Ni-IDA/Ni-NTA Resin 充分悬起，装入纯化柱中。4. 使用 5 mL Binding buffer 平衡纯化柱。5. 将蛋白溶液过纯化柱 2 次。6. 使用 15 mL Wash buffer 过柱，充分洗去未结合蛋白。7. 用 5 mL Elution buffer 过柱，每次 1 mL，洗脱液收集于离心管，置于冰上，取样直接 SDS-PAGE 分析，蛋白样品进行生化分析，剩余样品保存至-80℃。8. 使用 5 mL Regeneration buffer 过柱，充分洗去纯化柱上残余蛋白。9. 大量水冲洗纯化柱后加入 15 mL 20%乙醇保存纯化柱至 4℃。二、包涵体的纯化 包涵体是外源基因在原核细胞中表达时，尤其在大肠杆菌中高效表达时，形成的由膜包裹的高密度、不溶性蛋白质颗...
